DEAE-瓊脂糖凝膠FF的使用方法是什么？

上海信帆生物供應DEAE-瓊脂糖凝膠FF，產(chǎn)品質量穩(wěn)定，庫存充足！

DEAE-瓊脂糖凝膠FF

產(chǎn)品簡介：

DEAE-瓊脂糖凝膠FF 是將二乙胺基乙基鍵合在快流速瓊脂糖凝膠上形成的一種弱陰離子交換

介質，具有優(yōu)異的流動性能，廣泛用于生物制藥和生物工程下游蛋白質、核酸及多肽的離子交換制

備。

1 理化指標

項目指標

離子交換基團-O-CH2CH2-N+(C2H5)2H

離子交換類型弱陰離子，可交換離子Cl-

基質6%交聯(lián)瓊脂糖

蛋白質吸附容量95mgHSA/ml 介質

總離子交換容量0.09~0.13 mmol/ml 介質

粒徑45~165 μm

最大流速* 300cm/h

工作溫度4~40℃

耐壓0.3 MPa

pH 穩(wěn)定性1~14 (短時間)；3~12 (長時間)

pH 工作范圍2~9

化學穩(wěn)定性

所有常用的水相緩沖液；0.1mol/L 氫氧

化鈉；

*檢測條件： 層析柱16mm×100mm *柱床高5cm，25℃，流動相為0.1mol/LNaCl。

2 貯存

產(chǎn)品應密封貯存在4℃~25℃（保存溶液為20% 乙醇），通風、干燥、清潔的地方。不能冷凍。

用過的柱子貯存在4℃（20% 乙醇）。

3 應用

本產(chǎn)品具有高化學穩(wěn)定性、高流速、高載量、好的機械性能、可在位清洗、多次重復使用等

特點，非特異性吸附低，回收率高，適用于工業(yè)規(guī)模生物試劑，適用于在pH 工作范圍內(nèi)可形成負離子

的生物大分子的分離純化，廣泛用于生物制藥和生物工程下游蛋白質、核酸及多肽的離子交換制備。

4 使用方法

4.1 裝柱

1）將所有實驗材料均需平衡至進行色譜層析操作的溫度；

第2頁，共2 頁

2）實驗所需要用到的緩沖液以及洗脫液進行脫氣處理；

3）DEAE-瓊脂糖凝膠FF 的儲存液為20%乙醇，需要用去離子水*清洗掉保存液。

4）在柱子下端加入純水裝柱子，以排除氣泡，將填料連續(xù)倒入柱子時，要用玻璃棒緊靠柱子

內(nèi)壁引流，以減少氣泡的產(chǎn)生，讓填料先自然沉降到填料體積不再變化，用上樣的平衡液平衡柱后

即可上樣。

4.2 平衡

讓平衡緩沖液以一定流速流過柱子，到流出液電導和pH 不變。平衡液是低濃度的緩沖溶液，

如Tris 、PBS 等。

4.3 上樣

（1）樣品用平衡液配制，渾濁的樣品要離心和過濾后上樣。鹽濃度太大的樣品處理后再配。

（2）一般情況是讓目標產(chǎn)品結合在柱子上，用平衡液洗去雜質，再選擇一種洗脫液洗下目標產(chǎn)品。

（3）介質對樣品組分吸附的程度取決于樣品的帶電性質、流動相的離子強度和pH 值。鹽濃度小，

介質對樣品組分吸附較牢。用DEAE 介質時，推薦的pH 值是至少大于目標產(chǎn)品等電點1 個單位。

4.4 洗脫

DEAE 介質可用增大鹽濃度或減小pH 值進行洗脫，常用增大鹽濃度的辦法洗脫。

4.5 再生

一般用高鹽濃度的緩沖液（含1~2mol/L NaCl）洗或減小pH 洗10 倍以上柱體積，接著用結合

蛋白的平衡液洗到平衡，可再次使用。

若有失活蛋白質或脂類物質在再生時洗不掉，可用在位清洗（CIP）除去。

4.6 在位清洗

（1）對于以離子鍵結合上去的蛋白，可以用2M Nacl 去除。

（2）對沉淀蛋白、對以疏水性結合的蛋白或脂類，可用0.1M NaOH 去除。

（3）對強疏水性結合的蛋白、脂類等，用4~10 倍柱體積的70%乙醇或30%異丙醇清洗，但要注

意有機溶劑的濃度以梯度的方式逐漸增加，否則容易產(chǎn)生氣泡。

清洗完畢后，用至少10 倍緩沖液平衡柱子。

4.7 注意

在裝柱、使用和保存柱子的時候，要避免柱子流干，氣泡進入。

注意事項：

1. 上樣之前，樣品必須經(jīng)過膜過濾及去除色素，否則雜質及色素會被吸附到填料上，影響填料的

正常使用。

2. 在使用過程中，避免使用高濃度的強酸強堿，酸和堿的濃度應低于0.15 摩爾。堿會使流速變慢。

3. 離子交換介質在選擇層析柱時，避免使用細長柱，會增加實驗操作壓力。

4. 不同的樣品，平衡，吸附和洗脫方法不相同，可以根據(jù)相關的文獻進行。

DEAE-瓊脂糖凝膠FF的使用方法是什么？